Afin d'utiliser des animaux à des fins de recherche, d'enseignement ou d'expérimentation, l'utilisateur d'animaux doit remplir toutes les obligations liées à ce privilège. Ces obligations comprennent :

1. Achèvement d'une formation adéquate pour fournir des compétences dans la manipulation des espèces à utiliser et des compétences dans les procédures à utiliser. Cette formation peut être réalisée par le biais de sites de formation en ligne, de visionnage de vidéos/CD de formation, etc.
2. Approbation du comité institutionnel de soin et d'utilisation des animaux pour l'utilisation d'animaux tel que proposé dans le formulaire officiel de protocole de soin et d'utilisation des animaux.

1. INTRODUCTION, APERÇU, PRINCIPES
   La loi fédérale exige que les chercheurs sur les animaux consultent le vétérinaire traitant pendant les étapes de planification des procédures animales pour assurer, entre autres, l'utilisation appropriée des anesthésiques, des analgésiques et des tranquillisants. Lorsque vous remplissez le formulaire Protocole d'utilisation des animaux, vous devrez remplir une section traitant de l'utilisation d'anesthésiques et d'analgésiques, y compris la posologie et la voie d'administration. Les anesthésiques et analgésiques les plus couramment utilisés pour les animaux de laboratoire ; leur dose, voie d'administration et durée d'action approximative sont énumérés ci-dessous par espèce. Ces informations ne doivent être utilisées que comme lignes directrices, car il peut y avoir des variations substantielles entre les souches ou les races au sein d'une espèce. La variabilité dose-réponse en anesthésie est devenue de plus en plus courante avec l'avènement des souris génétiquement modifiées. Consulter le vétérinaire de l'établissement peut vous aider à choisir l'agent approprié à vos besoins particuliers. Des considérations supplémentaires liées à l'utilisation appropriée, aux mécanismes d'action, aux voies d'administration acceptées, à la surveillance de la profondeur de l'anesthésie et à d'autres aspects techniques de l'utilisation d'agents anesthésiques peuvent être fournies par le vétérinaire. Il est particulièrement important que les chercheurs sur les animaux informent le vétérinaire en cas de mortalité liée à l'anesthésie, si la réponse du sujet aux protocoles anesthésiques est incohérente, si les doses recommandées d'anesthésique ou d'analgésique semblent inadéquates, etc. Tout problème ou incohérence avec l'analgésie doit être considéré comme grave. et discuté avec le personnel vétérinaire.
2. UTILISATION CONTRLÉE DE SUBSTANCE
   Certains anesthésiques et analgésiques couramment utilisés en médecine vétérinaire sont des substances contrôlées. La plupart des analgésiques et de nombreux anesthésiques injectables sont des substances contrôlées. Leur utilisation oblige l'investigateur à obtenir un numéro DEA (Drug Enforcement Administration) ou à obtenir le médicament délivré individuellement auprès de l'ARF. L'ARF maintient l'enregistrement DEA dans le but de fournir aux chercheurs sur les animaux des substances contrôlées qui sont essentielles pour la conduite de la recherche approuvée par l'IACUC. Un journal d'utilisation des substances contrôlées fourni par l'ARF doit être tenu et ces médicaments doivent être stockés dans une boîte verrouillée à accès restreint. Pour demander des substances contrôlées à l'ARF, vous devez soumettre un formulaire de demande de substance contrôlée au bureau de l'ARF.
3. AGENTS D'INHALATION
4. AGENTS ANESTHESIQUES INJECTABLES
   Les agents anesthésiques injectables ont longtemps été le choix des chercheurs sur les animaux de laboratoire, non pas en raison de leurs qualités anesthésiques supérieures, mais plutôt en raison de leur relative facilité d'utilisation. Malheureusement, même lorsqu'ils sont utilisés selon les schémas posologiques établis, les mortalités liées à l'anesthésie sont beaucoup plus élevées pour les agents injectables, par rapport aux anesthésiques gazeux correctement administrés. Il est beaucoup plus difficile de contrôler la profondeur de l'anesthésie avec des anesthésiques injectables, à moins qu'un cathéter intraveineux ne soit en place. Les périodes de récupération sont également généralement prolongées et l'hypothermie est une séquelle courante de l'utilisation d'anesthésiques injectables. Dans la mesure du possible, les anesthésiques inhalés doivent être préférés aux agents injectables pour une utilisation chez les animaux de laboratoire. Les liens ci-dessous fournissent quelques lignes directrices pour le choix de l'anesthésique. Le vétérinaire traitant doit être consulté pour des recommandations spécifiques.
5. AGENTS
   Les agents analgésiques pour animaux de laboratoire sont généralement les plus efficaces administrés par injection à la fois avant le début des procédures induisant la douleur et également après la procédure si des signes de douleur sont observés. Les composés disponibles par voie orale ne sont généralement pas recommandés car il est difficile de fournir un dosage précis et constant car les animaux ont tendance à boire moins lorsqu'ils souffrent, les analgésiques ne sont généralement pas agréables au goût et la plupart sont insolubles dans l'eau. Le meilleur régime pour la gestion de la douleur impliquant des interventions chirurgicales douloureuses consiste à utiliser des analgésiques de manière préventive dans le cadre de l'induction de l'anesthésie. Les analgésiques doivent être utilisés pour toutes les interventions chirurgicales majeures, pour la gestion de la douleur postopératoire. Bien qu'une dose unique administrée en préopératoire puisse être suffisante, tous les animaux doivent être surveillés pour des signes de douleur postopératoire afin de déterminer si des doses supplémentaires sont indiquées. L'utilisation et la dose d'analgésiques sont très dépendantes de l'espèce et de la procédure. Les liens ci-dessous fournissent des directives spécifiques aux espèces pour le choix des agents analgésiques disponibles. Le vétérinaire traitant doit être consulté pour les schémas analgésiques appropriés et spécifiques.
6. RECOMMANDATIONS DE POSOLOGIE (PAR ESPÈCE)
   Des recommandations pour le choix de l'anesthésique sont fournies dans les sections suivantes ; divisé par espèces. Notez qu'il s'agit de dosages recommandés, qui ont fonctionné avec une relative cohérence dans chacune des espèces répertoriées. Cependant, de nombreux facteurs affectent le succès ou l'échec des anesthésiques et des analgésiques, notamment ; la santé de l'animal, le stress, la douleur, la détresse, l'heure de la journée, l'état métabolique, etc. Tous les chercheurs doivent consulter le personnel vétérinaire pour le régime anesthésique/analgésique approprié.
   AMPHIBIENS (grenouilles)
   OISEAUX (Poulets, Canards)
   FURETS
   MICE
   LAPINS
   LES RATS

Installations de chirurgie ARF
Les exigences générales pour la chirurgie, la survie et la non-survie, pour toutes les espèces sont décrites dans un résumé détaillé, « Directives chirurgicales générales ». Un deuxième résumé intitulé « Directives chirurgicales pour les rongeurs » décrit des informations et des exigences spécifiques pour la chirurgie impliquant des rongeurs de laboratoire.

Directives de chirurgie de survie
La chirurgie de survie, quelle que soit l'espèce, doit être menée de manière aseptique. Les interventions chirurgicales sur des espèces autres que les rongeurs, plus grosses que le rat de laboratoire, doivent être réalisées dans des installations chirurgicales dédiées (installation de chirurgie ARF). Les exigences générales pour la chirurgie, la survie et la non-survie, pour toutes les espèces sont décrites dans un résumé détaillé, « Directives chirurgicales générales ». Un deuxième résumé intitulé « Directives chirurgicales pour les rongeurs » décrit des informations et des exigences spécifiques pour la chirurgie impliquant des rongeurs de laboratoire. En général, une technique aseptique, une anesthésie et une analgésie appropriées, une surveillance peropératoire adéquate du patient et des dispositions pour les soins postopératoires sont des exigences minimales pour effectuer une chirurgie de survie dans toutes les espèces. Les principes de la chirurgie aseptique abordent les points suivants : la stérilisation des instruments, la préparation du chirurgien, la préparation du site opératoire et toutes les interventions chirurgicales, de l'incision cutanée à la fermeture. La surveillance de l'anesthésie est impérative et doit être documentée chez les espèces plus grandes que les souris et les rats.

Directives chirurgicales

Directives pour la chirurgie non-survie (terminale, aiguë)
La chirurgie de non-survie est définie comme une intervention chirurgicale réalisée sous anesthésie générale, et le patient ne se remet pas de l'anesthésie. L'euthanasie est réalisée à la fin des procédures chirurgicales expérimentales, généralement avec une surdose d'anesthésique, administrée par voie intraveineuse. Les procédures de non-survie nécessitent l'utilisation d'instruments propres et des dispositions pour une surveillance adéquate de la profondeur de l'anesthésie.

Des procédures mineures telles que des injections, des doses orales, des observations, des pesées, etc. peuvent être effectuées dans les animaleries. L'ARF fournit des salles d'intervention avec anesthésie par inhalation, chambres d'induction, cônes de nez, dispositifs d'évacuation des gaz résiduaires et unités de récupération pour les interventions dans lesquelles l'anesthésie peut être souhaitable pour la contention ou l'immobilisation, telles que la collecte de sang, les biopsies, les injections intraveineuses, etc.

La manipulation et la contention de tous les animaux, mais en particulier des rongeurs, est une compétence développée à partir de la pratique et d'un entraînement approprié. Les animaux doivent être immobilisés d'une manière douce, ferme et rapide afin de minimiser le potentiel de stress et de préjudice à la fois pour l'immobilisé et l'entraineur. L'ARF propose des ateliers « pratiques » pour les personnes nécessitant une introduction aux méthodes de contention appropriées.

Tous les logements et l'élevage des animaux de recherche sont fournis par le personnel de l'ARF conformément aux Guide pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire. Si un protocole approuvé par l'IACUC décrit des conditions de logement non standard, le personnel de l'ARF doit être informé de l'exemption. Une procédure opératoire standard (SOP) doit être élaborée par le chercheur, approuvée par le vétérinaire de l'ARF et affichée dans la salle des animaux. Si le PI assume la responsabilité de l'élevage des animaux, un journal/feuille d'enregistrement doit être affiché dans la salle qui enregistre les tâches d'élevage effectuées par le personnel de recherche.

Euthanasie des animaux de laboratoire
L'euthanasie est l'acte d'induire une mort humaine. Chez les animaux de laboratoire, l'euthanasie est le plus souvent le critère d'évaluation de toute expérience. Il est impératif que les chercheurs procèdent à l'euthanasie dans le respect de la vie de l'animal et en comprenant que la douleur, l'anxiété et la détresse doivent être minimisées pendant la procédure. La technique employée pour l'euthanasie doit assurer une perte de conscience rapide, suivie d'un arrêt des fonctions cardiaques et respiratoires, et enfin, d'une perte d'activité cérébrale. Quelle que soit la méthode choisie, il faut envisager de réduire le stress et l'anxiété associés à la procédure. Les directives de l'American Veterinary Medical Association sur l'euthanasie ont rédigé un rapport en 2020. Ce rapport contient des directives spécifiques pour chaque espèce et des méthodes d'euthanasie acceptables. Consultez ce rapport sur : http://www.avma.org/issues/animal_welfare/euthanasia.pdf. Afin d'effectuer l'euthanasie sur les animaux, la personne doit être suffisamment formée et compétente dans la procédure. Les méthodes d'euthanasie doivent être détaillées dans le protocole de soin et d'utilisation des animaux approuvé par l'IACUC. Les méthodes utilisées doivent inclure des mesures pour s'assurer que le décès est survenu ; qu'il n'y a aucune chance pour l'animal de récupérer et de reprendre conscience. La formation est disponible par l'intermédiaire de l'ARF ou du Bureau de la protection des animaux et de la conformité.

Euthanasie des fœtus et des nouveau-nés de souris et de rat
Les fœtus en fin de vie et les rongeurs nouveau-nés sont capables de ressentir de la douleur et de la détresse. Il faut tenir compte des exigences supplémentaires pour pratiquer l'euthanasie sans cruauté des fœtus en fin de terme et des nouveau-nés. Le NIH Animal Research Advisory Council a développé Lignes directrices pour l'euthanasie des fœtus et des nouveau-nés de rongeurs. Passez en revue ces recommandations pour déterminer les méthodes acceptables d'euthanasie pour les fœtus et les nouveau-nés de souris et de rat.

Euthanasie des rongeurs à l'aide de dioxyde de carbone
L'asphyxie au dioxyde de carbone est la méthode la plus couramment utilisée pour euthanasier les petits rongeurs (p. ex. souris et rats). Une méthodologie appropriée doit être utilisée pour réduire le potentiel d'anxiété, de détresse et de douleur associé à des concentrations élevées de CO₂. Le NIH Animal Research Advisory Council a publié Lignes directrices pour l'euthanasie des rongeurs à l'aide de dioxyde de carbone. L'ARF a affiché ces recommandations sous forme de SOP (Standard Operating Procedure) dans l'ARF à proximité des stations de CO2. Si CO₂ l'euthanasie est utilisée dans les laboratoires de recherche, le PI doit demander l'équipement approprié à l'ARF, et afficher le SOP fourni par l'ARF.

L'ARF est responsable de TOUS les achats d'animaux de recherche. TOUTES les demandes d'animaux et toutes les commandes d'animaux DOIVENT être passées UNIQUEMENT par le bureau de l'ARF. Toutes les demandes et demandes d'utilisation d'animaux doivent être adressées au bureau de l'ARF. Les procédures d'achat d'animaux sont détaillées ci-dessous :

• Prérequis / Conditions
  Pour maintenir des animaux dans l'ARF, un chercheur principal DOIT :
  • Disposer d'un protocole de soin et d'utilisation des animaux approuvé par l'IACUC et en nombre suffisant pour les espèces demandées.
  • Avoir un compte ARF à des fins de facturation. Pour ouvrir un compte, adressez vos demandes à Service comptabilité ARF.
• Vendeurs commerciaux
  Lorsque vous passez une commande d'animaux pour rongeurs, vous devez d'abord déterminer l'espèce/souche/sous-souche/génotype dont vous avez besoin. En cas de doute sur le fournisseur, veuillez consulter la liste des fournisseurs approuvés suivante pour déterminer la disponibilité, le coût, etc.
  • Modèles de recherche Envigo
  • Laboratoires Jackson
  • Laboratoires Charles River
  • Taconique
• Délais de commande d'animaux
  • Les commandes d'animaux aux vendeurs sont régulièrement passées le mercredi matin à 10h00.
  • Les demandes de commande d’animaux doivent être passées via Topaz Elements AVANT 10h00 le mercredi matin la semaine précédant la date de livraison demandée.
  • Les commandes spéciales doivent être passées et communiquées au personnel de l'ARF pour la commande.

Afin de recevoir des animaux d'un autre établissement universitaire ou de recherche, le transfert doit d'abord être approuvé par le vétérinaire traitant du HSC ARF. L'approbation est basée sur la détermination du statut sanitaire et SPF (Specific Pathogen Free) des animaux. Afin de mener à bien cette évaluation, le vétérinaire HSC ARF doit examiner un rapport de surveillance sanitaire, qui doit être fourni par le personnel vétérinaire de l'établissement d'origine. Procédures de transfert d'animaux :

1. Complet requis MTA formulaire 
2. Remplissez le IMPORTER DES ANIMAUX À UNM formulaire
3. Transmettre le document à l'institution d'origine pour terminer la copie des coordonnées vsugita@salud.unm.edu .
4. Envoyez le formulaire rempli au vsugita@salud.unm.edu avec une explication complète de la demande
5. Le bureau de l'ARF vous notifiera l'approbation ou le rejet de la demande, ainsi que les conditions d'importation et de quarantaine des animaux.
6. Lorsqu'il est informé de l'approbation, le PI est chargé de passer une commande d'animaux dans TOPAZE.

1. Complétez le formulaire EXPORTATION D'ANIMAUX DE L'UNM
2. Transmettre le document complété à l'institution de destination en copie vsugita@salud.unm.edu
3. Coordonner l'expédition par Superviseur ARF
4. ARF gérera l'expédition/le transfert

Tous les animaux maintenus dans l'ARF doivent être maintenus sur un protocole de soin et d'utilisation des animaux approuvé par l'IACUC. Si vous souhaitez transférer des animaux d'un protocole à un autre, vous devez connaître les numéros du protocole animal. Si les animaux sont transférés d'un IP à un autre, selon des protocoles approuvés, les noms des IP et les numéros de protocole doivent être disponibles.

1. Remplir et soumettre le formulaire de transfert d'animal approprié
2. fournissez les informations suivantes:
   1. Quantité d'animaux, nombre de cages
   2. Âge gendre
   3. Modalités de logement demandées
   4. Nombre de cartes cage nécessaires
   5. Numéros de protocole
   6. Nom(s) de PI
   7. Chambre des animaux demandée

1. Compléter et soumettre MTA formulaire
2. Complétez le formulaire IMPORTER DES ANIMAUX À UNM
3. Transmettez le formulaire d'importation rempli à l'institution d'accueil et copiez vsugita@salud.unm.edu
4. IMPORTATION : Suivez les directives de l'USDA pour l'importation d'animaux aux États-Unis - http://www.aphis.usda.gov/import_export/animals/live_animals.shtml. L'USDA ne réglemente normalement pas l'importation de rongeurs de laboratoire à moins qu'ils n'aient été exposés à des maladies animales étrangères liées à l'agriculture. Cependant, des informations spécifiques doivent être ajoutées au certificat de santé sur la base des directives de l'USDA pour l'importation de mammifères de laboratoire n° 1103 [ http://www.aphis.usda.gov/import_export/animals/animal_import/downloads/ilivemam.html]. Le CDC réglemente l'importation d'espèces spécifiques d'animaux et d'animaux et de tissus infectés s'ils présentent un risque de maladie infectieuse humaine. Les espèces spécifiques comprennent les primates non humains, les chiens, les chats, les furets, les rongeurs africains et d'autres animaux exotiques. Sans agent pathogène spécifique (les souris et les rats de laboratoire SPF ne sont généralement pas réglementés par le CDC.

• • EXPORTATION : Contactez le Superviseur ARF
  • Contactez l'UNM HSC Vétérinaire ARF pour les informations supplémentaires qui peuvent être nécessaires.

Le programme de recherche animale du HSC est enregistré en tant qu'établissement de recherche auprès de l'USDA (85-R-0014), possède une lettre d'assurance en dossier auprès de PHS/OLAW (A3350-01) et est entièrement accrédité par l'Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International (AAALAC Accreditation Unit File No. 000222).

L'ARF est accréditée AAALAC et adhère à toutes les dispositions de la politique du PHS sur le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire, le Guide pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire, et la Loi sur la protection des animaux et les règlements d'application.

Pour la soumission de propositions au NIH impliquant des animaux vertébrés, la « feuille de travail pour l'examen de la section des animaux vertébrés (VAS) » (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASchecklist.pdf) doit être référencé pour garantir que les informations nécessaires sur le programme animalier sont fournies. Le NIH a publié des directives supplémentaires pour la préparation de la VAS (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASfactsheet_v12.pdf), en date du 18 janvier 2012. En outre, ARF fournit un modèle standard pour appuyer les informations demandées en vertu des paragraphes 3 à 5 de la présente Liste de contrôle de la plaque signalétique ARF.

L'UNM HSC maintient 40,000 XNUMX pi.ca. de l'espace des installations de ressources animales (ARF), dirigé par Kevin O'Hair, DVM, qui est certifié par le Collège de médecine animale de laboratoire (ACLAM) et membre du corps professoral du département de pathologie de la faculté de médecine. L'ARF est situé au rez-de-chaussée contigu du bâtiment des sciences médicales de base (BMSB) et de l'installation de recherche biomédicale (BRF). L'ARF est maintenu en tant qu'installation exempte d'agents pathogènes spécifiques (SPF) essentielle à la recherche scientifique actuelle et à l'état de la recherche, et contient des installations de barrière spécialisées pour l'élevage de souris de laboratoire. L'ARF fournit également un soutien technique et vétérinaire pour tous les projets d'enseignement et de recherche utilisant des animaux de laboratoire. L'ARF englobe les zones d'hébergement des animaux et les zones à usage spécial telles que les salles de traitement, les laboratoires de procédures, les zones de recherche sur l'imagerie, l'exposition aux risques biologiques et chimiques, les salles de chirurgie et les salles d'hébergement des rongeurs barrières. Le programme de soins aux animaux est soutenu par Christie Wilcox, AS, RLATG, responsable des opérations, et une équipe de six techniciens en animaux de laboratoire.

Installations spécialisées :

1. Installations à risque biologique (BSL)
2. Obstacles à la reproduction et à la recherche
3. Installation d'exposition aux produits chimiques dangereux
4. Chirugie
5. Laboratoires de procédures
6. Nécropsie
7. Imagerie

Tous les animaux du Centre des sciences de la santé sont hébergés dans les installations gérées par l'Animal Resources Facility (ARF). Les salles d'élevage des animaux sont sous contrôle de la température et de l'humidité. L'établissement est dirigé par un vétérinaire à temps plein, Tara G. Ooms Konecny, DVM, DACLAM (directeur de l'ARF et vétérinaire traitant) et composé d'un superviseur d'établissement (RLATG), de 3 techniciens supérieurs en soins des animaux (LAT) et de 7 techniciens en soins des animaux ; le directeur de l'ARF ou un vétérinaire clinique d'urgence est disponible en tout temps. Le personnel de soin des animaux effectue des procédures d'élevage de routine (p. ex., nettoyage des cages, alimentation et abreuvement) et vérifie les animaux quotidiennement pour évaluer leur état. Des fiches de salle d'observation clinique sont remplies quotidiennement par le personnel soignant et transmises au responsable des opérations. Ces rapports sont transmis au vétérinaire lorsque des problèmes cliniques sont signalés. Le personnel du laboratoire surveille les animaux lorsque les traitements sont administrés et les scores individuels des conditions post-procédurales des animaux sont enregistrés lorsque cela est jugé nécessaire en fonction de la morbidité attendue et conformément aux protocoles respectifs approuvés par l'IACUC. Le personnel vétérinaire surveille les animaux dans leurs cages d'origine, toutes les deux semaines ou immédiatement lorsque des problèmes cliniques sont signalés par les soins aux animaux ou le personnel de laboratoire. si les animaux présentent des signes d'infection, de maladie ou de détresse, le personnel vétérinaire s'entretient avec le personnel du laboratoire pour recommander des antibiotiques, des analgésiques ou d'autres produits pharmaceutiques/soins de soutien appropriés. Le vétérinaire peut intervenir ou recommander l'euthanasie en fonction de préoccupations liées au bien-être des animaux.

Le directeur de l'ARF est responsable de l'administration du programme de soins vétérinaires, de la supervision de la gestion des installations, de la supervision, de la formation et de la conformité. Le programme de soins vétérinaires comprend des dispositions pour la surveillance de la santé de tous les animaux, des programmes d'assurance qualité spécifiques pour les populations de rongeurs, un programme de tests de quarantaine et des directives de traitement spécifiques.

Le directeur de l'ARF fournit également un examen et une consultation vétérinaires pour tous les protocoles d'enseignement et de recherche soumis au comité institutionnel de protection et d'utilisation des animaux.